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行業(yè)新聞

RNA抽提- 成功經(jīng)驗法則大公開!

時間:2020-07-21 11:09:45 來源:本站 點擊:84次

本期專文要來跟大家討論的話題是核糖核酸(RNA)的萃取,看到這里各位心中可能已經(jīng)起了疑問:RNA萃取不是很簡單嗎?只要照著標(biāo)準步驟操作,加一加試劑就完成了,有必要大費周章特地開篇幅來談這件事嗎?其實越簡單的東西遇到困難時就越難解,各位看倌就請耐著性子,聽我們娓娓道來。Lab的經(jīng)驗和客戶的難題以華聯(lián)基因體實驗室的長期以來承接客戶RNA檢體的經(jīng)驗來說,我們經(jīng)常遇到的問題是(1)RNA的總量不夠,(2)

本期專文要來跟大家討論的話題是核糖核酸(RNA)的萃取,看到這里各位心中可能已經(jīng)起了疑問: RNA 萃取不是很簡單嗎?只要照著標(biāo)準步驟操作,加一加試劑就完成了,有必要大費周章特地開篇幅來談這件事嗎?其實越簡單的東西遇到困難時就越難解,各位看倌就請耐著性子,聽我們娓娓道來。

Lab 的經(jīng)驗和客戶的難題
以華聯(lián)基因體實驗室的長期以來承接客戶RNA檢體的經(jīng)驗來說,我們經(jīng)常遇到的問題是(1)RNA的總量不夠,(2)RNA有嚴重的鹽類污染,(3)RNA有嚴重的有機溶劑污染,(4)DNA污染及(5)樣品降解嚴重(圖一圖二)。前四項問題都還好解決,只需要再次萃取或進行純化即可解決,但是樣品降解就較為棘手,常常因重新準備檢體一來一往,耗掉不少心力和時間,最后也拿不到好的結(jié)果。
客戶經(jīng)常會問為什么執(zhí)行芯片實驗會如此要求RNA質(zhì)量呢?而其他的檢測方法如實時定量聚合連鎖反應(yīng)(Real-time Quantitative Polymerase Chain Reaction, Q-PCR) 卻不需要?
回答這個問題前就要從實驗的原理說起,簡單的講Q-PCR的檢測原理是針對要檢測的基因,設(shè)計一對基因特異性的引子,透過反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)(RT)配合PCR的放大方式和及時偵測放大的產(chǎn)物量,藉以回推原始的RNA含量;而RT的方式主要是采用隨機引子(Random_primer)、進行互補DNA (cDNA)的翻制,因此即便RNA有些微裂解,作為模板的RNA也可以忠實的被翻制成cDNA。但是芯片實驗進行,主要是以放大和訊息RNA(mRNA)完全配對的互補RNA(cRNA) ,再進行雜合反應(yīng),此步驟必須利用poly(dT)- T7啟動子序列和訊息RNA的poly(A)結(jié)合后,將T7啟動子序列連帶的鑲?cè)敕崔D(zhuǎn)錄的cDNA的5端,再經(jīng)由T7啟動子驅(qū)動試管內(nèi)反轉(zhuǎn)錄反應(yīng),生合成反股的cRNA,再進行后續(xù)的芯片雜交的實驗??上攵?,如果RNA有降解嚴重的現(xiàn)象,表示許多mRNA并不能忠實的被放大因此會產(chǎn)生許多偽陰性的結(jié)果。至此讀者心中可能就有一個概念了,假設(shè)Q-PCR和芯片被應(yīng)用在瞎子摸象的故事情節(jié)中,用Q-PCR的人只要能摸到大象的耳朵就可以說這里有大象,透過計算耳朵的數(shù)量就可以計算大象的數(shù)量;但是用芯片實驗方法的人,必須先確認所摸到的個體具備大象的完整特征,才能確確實實的說這里有一只大象。這也就說明了為何芯片實驗會如此要求RNA的質(zhì)量。

RNA 萃取的方法有哪些?
除了傳統(tǒng)的純化方法,如 LiCl 沉淀等外,因應(yīng)RNA研究的龐大需求,目前市面上已有許多琳瑯滿目的RNA萃取套組,供給不同萃取需求目的之研究,而這些產(chǎn)品的設(shè)計原理不外乎是利用有機溶劑進行分層萃取如:(1)phenol-chloroform;或利用RNA于酒精中呈現(xiàn)疏水性的特性,進行吸附分離如:(2)吸附性管柱 (Silica column)。一般而言,只要有正確的RNA操作觀念配合正確的步驟,大致上都可以萃取出質(zhì)量不錯的RNA,但是不同的萃取方法所取得的RNA組成分布會有所不同,因此建議要根據(jù)所要分析的對象RNA,選擇正確的萃取方法或套組,例如:如果要研究小RNA的表現(xiàn)就不可選擇以mRNA為萃取對象的方法。此外,內(nèi)源核醣核酸分解酶(RNase)含量高的樣品,建議使用含phenol-chloroform的裂解液,以增加去除酶活性的能力。以下我就以TRIzol的操作步驟為例,來跟讀者分享RNA萃取步驟中應(yīng)注意事項及改善萃取RNA值與量的方法。

器具如何清潔?
RNA萃取過程中,會面臨的最大的敵人就是RNase,RNase是一個非常頑強的RNA分解酶,它幾乎無所不在,在我們所處的環(huán)境中、身體表面甚至細胞內(nèi)就有內(nèi)源性的RNase存在。RNase展現(xiàn)活性時不需要輔酶(coenzyme)或輔因子(cofactor),在變性溶液的環(huán)境下雖然會失去活性,但是當(dāng)去除變性物質(zhì)后,仍然會展現(xiàn)些許活性,甚至在低濃度的SDS溶液中仍具有活性,因此能做到有效杜絕去除RNase的污染則RNA的萃取就成功了一半了。因此在操作前的首要工作就是,將所有器械置于180℃的高溫下干烤6小時或更長時間;或者以 3% H2O2 浸泡30 分鐘以上,再以滅過菌的DEPC水沖洗干凈后,用鋁箔包覆滅菌后使用。在操做萃取時必須于清潔、無粉塵飛揚的環(huán)境,如果環(huán)境允許的話,最好在生物柜或化學(xué)柜中操作。

樣品如何收集/保存? 
先前我們提及細胞內(nèi)存在有內(nèi)源性RNase,且其表現(xiàn)量在不同種類的組織中差異極大。例如腦組織和心臟組織擁有相對低的內(nèi)源性RNase,但是胸腺組織和胰臟組織則保有約100,000倍于腦組織的內(nèi)源RNase。因此動物組織等最好都先用液氮冷凍起來,再進行后續(xù)的處理,不建議直接丟到-80℃冰箱。因為急速冷凍可凍結(jié)RNase的活性,但-80℃冷凍算是緩慢降溫,仍會造成部分RNA的降解;如果無法快速冷凍檢體,也可以采用市售的檢體保存液,亦可達到不錯的效果。

如何進行樣品的破碎及均質(zhì)化?
有關(guān)樣品的破碎和均質(zhì)化,這個步驟的重點應(yīng)該擺在如何讓有機裂解液快速浸潤檢體,phenol-chloroform可以溶解細胞,連帶的會造成蛋白變性,因此內(nèi)源性RNase的活性就會去活化;相反的如果無法讓細胞快速裂解使蛋白裸露進而變性,則RNase就會降解RNA,因此如何使不同組織細胞快速裂解,就是一個值得思考調(diào)整的課題,也是左右成敗的關(guān)鍵。就檢體類型來說,一般培養(yǎng)細胞多為單層細胞不會遇到這樣的問題,萃取較為容易,但是立體的組織進行萃取就會遇到均質(zhì)化不均的問題進而造成RNA降解。因此低溫的液氮碾磨就是破碎組織最有效的辦法,但是液氮碾磨較為麻煩,如果遇到樣品數(shù)比較多的時候耗時費功效力不彰,但如果條件允許的話,這仍然是一個好方法。但考慮效率和速度,均質(zhì)機就是一個更好的選擇,但是使用均質(zhì)機的過程有幾個重點必須注意:(1)速度要快,在RNase展現(xiàn)活性前完成細胞均質(zhì)化,(2) 避免產(chǎn)熱,以免降解 RNA,(3)不要過度研磨,過度研磨會打斷DNA,造成小片段的DNA污染。此外,在均質(zhì)裂解細胞的過程中有一個常被會忽略的重點,就是一般細胞和有機裂解液的比例常被忽略,有些操作者會認為多放一些組織就可以得到大量的RNA,但是沒意識到太多的組織和太少的裂解液,造成細胞無法完全被裂解,RNase無法完全被變性,效果反而適得其反,最后RNA嚴重降解。因此如果反應(yīng)完后均質(zhì)液太過粘稠無法分層,就必須再加入裂解液。

樣品的離心分層
在phenol-chloroform的萃取方式中,混合液的離心轉(zhuǎn)數(shù)不可任意調(diào)整,應(yīng)固定于12000g的轉(zhuǎn)數(shù),以免因沉降系數(shù)改變造成無法有效分層。當(dāng)離心完成后可以明顯觀察到檢體分成上面水層及下面有機層,而我們要的RNA就溶解在上面水層中,體積約有500~600μl左右。此時建議用小口徑的 100 或 200μl tip將水溶液分段吸取到干凈的1.5ml的離心管中,而在這個步驟常見的失誤就是:操作的人急于將水層取出而攪動原先的分層;或感覺萃取不易想要多回收一些RNA,于是將水層盡其可能的取出,因而造成吸取到有機溶液和大量的DNA污染(圖三),造成后續(xù)實驗處理上的困擾甚至實驗失敗,因此強烈建議只萃取7~8成的RNA水溶液進行下一個步驟,俗話說的好,所謂有失必有得,不必為了一顆樹而放棄整片森林,適時的取舍可以確保后續(xù)實驗順利進行。此外一般來說,phenol與水有一定比例的互溶,所以此時的RNA水溶液中仍有一定的phenol殘留,建議一定要再使用chloroform進行一次離心分層去除殘存phenol。

RNA 樣品的沉淀
一般我們會使用乙醇(水溶液:乙醇=1:2.5)或異丙醇(水溶液:異丙醇=1:1)進行RNA沉淀,在效果上并無明顯差異,但是如果已知RNA的含量是少的,則可以使用乙醇沉淀法,并將檢體置于-80℃冰箱間隔一個晚上再做離心的動作,并配合離心時間的增加,如此可增加RNA沉淀的回收率。

RNA 樣品的清洗去除鹽類
為了去除RNA沉淀物中的鹽類,我們可以采用70~75%乙醇進行洗滌,可能的話盡量讓核酸沉淀懸浮起來,最好的是使用兩次洗滌,再將離心管放入離心機中離心,用移液器將殘留的乙醇小心吸掉,稍微抽干或吹干核酸沉淀物使殘存的乙醇揮發(fā)后,再以DEPC水進行回溶。

 


結(jié)語
如果以上所闡訴的部分您都注意到了也改善了,但是仍然不能萃取出好質(zhì)量的RNA,那或許我們就必須檢視我們的實驗設(shè)計是否會導(dǎo)致RNA降解機制的活化,例如:細胞正在經(jīng)歷細胞凋亡或組織壞死的生理反應(yīng);或者處理的藥物會直接引起RNA降解等,如果是那可能就要作實驗設(shè)計修正或下修對RNA質(zhì)量的要求。



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